2. 江苏大学附属金坛医院重症医学科,常州 213200;
3. 南京中医药大学附属南京市中西医结合医院急诊科 210014
2. Department of Intensive Care Unit, Jintan Hospital, Jiangsu University, Changzhou 213200, China;
3. Department of Emergency, Nanjing Integrated Traditional Chinese and Western Medicine Hospital, Nanjing University of TCM, Nanjing 210014, China
脓毒症相关性脑病(sepsis-associated encephalopathy, SAE)是指大脑在无直接感染的临床或实验室证据前提下,因全身感染反应引起的多灶性或弥漫性脑功能障碍,临床表现为认知、行为、觉醒和意识状态的改变[1-4]。研究表明,合并SAE时脓毒症患者病死率高达49%,更为重要的是,脓毒症幸存者往往出现长期的学习、记忆、注意力的减退、焦虑抑郁等认知功能障碍,严重影响其生活自理能力和生活质量,显著增加家庭与社会经济负担[2, 4]。然而,SAE目前的发病机制仍不清楚。越来越多的研究证实, 抑制性微清蛋白(parvalbumin interneuron, PV)中间神经及其神经环路在神经认知活动中发挥重要的作用[5-9],推测其在SAE中也起关键作用。本研究旨在探讨海马γ振荡异常在SAE中的作用及机制,为SAE有效防治提供理论依据。
1 材料与方法 1.1 实验动物成年雄性Sprague-Dawley大鼠(2~3个月龄)70只,由南京中医药大学动物中心提供(动物合格证号:NO. 201909968),饲养于湿度45%、温度(24±1)℃,12 h灯照(07:00~19:00)的动物房中,实验过程中保证动物能够自由摄取食物和水。本研究中的所有动物实验均符合动物实验伦理和福利要求。
1.2 主要材料和试剂2%戊巴比妥钠(Sigma公司,美国)、多巴胺4(D4)受体激动剂RO-10-5824(MedChemExpress公司,美国)、兔抗PV多克隆抗体(Abcam公司,英国)、鼠抗D4单克隆抗体(Santa Cruz Biotechnology公司,美国)和兔抗GADPH抗体(Cell Signaling Technology公司,美国)、IgG-FITC或IgG-Cy3(Life Science Technology公司,美国)、辣根过氧化物酶偶联兔或羊抗鼠二抗、ECL显影液、BCA蛋白定量试剂盒均购自上海碧云天生物技术有限公司。
1.3 实验方法 1.3.1 SAE模型建立及分组大鼠腹腔注射2%戊巴比妥钠(40 mg/kg)进行麻醉,在无菌手术环境下切开腹正中切口暴露盲肠,在距盲肠远端约1 cm处用4-0号缝线结扎盲肠。然后用无菌的22号针将盲肠穿孔两次后轻轻挤压,通过穿刺点使少量粪便内容物进入腹腔。挤压完毕将肠子放回腹部,用3-0号无菌缝线缝合切口,采用本动物模型,大鼠生存率约为70%。根据随机数字表法随机分为以下3组:假手术组(sham组,n=18),盲肠结扎穿孔组(CLP,n =26),CLP+ RO-10-5824组(n =26)。其中,假手术组仅开放腹腔,未进行结扎和穿孔处理;CLP组建模之后立即用预热(37 ℃)生理盐水溶液(皮下注射,20 mL/kg)进行液体复苏治疗;CLP+ RO-10-5824组手术操作同CLP组,行为学测试前30 min给予腹腔注射RO-10-5824(3 mg/kg)。
1.3.2 旷场实验术后第10天行旷场实验测试,用于评估动物的探索行为和焦虑行为。将大鼠置于100 cm×100 cm×40 cm的敞箱中心,自由探索5 min。记录并分析中央格停留时间和活动总距离(XRXC404;上海欣软信息技术有限公司)。在每次测试结束时,用75%的酒精进行旷场清洁,以消除气味干扰。
1.3.3 新物体识别实验术后第10~11天行新物体识别测试,本实验采用塑料敞箱(100 cm×100 cm×40 cm)检测新物体的记忆和识别,共分两个实验。在第1天(训练试验),将大鼠放在敞箱中,对两个熟悉的物体进行5 min自由探索。在训练24 h后的探究实验中,将大鼠放在敞箱中,但将熟悉的两个物体(5 cm×5 cm×5 cm)中的一个换成颜色、形状和质地明显不同的新物体,继续让大鼠自由探索5 min。用视频跟踪系统记录探索时间,并计算新物体识别率如下:新物体识别率=在新物体区域花费的时间/(在新物体区域花费的时间+在熟悉物体区域花费的时间)。对物体的探索定义为动物的鼻子位于距离不超过2 cm的区域内,并积极地探索物体。
1.3.4 条件恐惧实验术后第13~14天行条件恐惧实验,将大鼠置于实验箱(32 cm×25 cm×25 cm)内进行条件恐惧实验。适应3 min后,给予30 s单频声音刺激(1 kHz,80 dB, CS),然后给予2 s足底电击(1 mA,US)。24 h后将大鼠再次放入同一实验箱中,在不给予任何刺激情况下进行场景测试以评估僵直行为。2 h后,在新场景中测试线索恐惧记忆,给予大鼠连续3 min和训练时相同的声音刺激并监测僵直行为。通过监测大鼠僵直行为时间来评估认知功能障碍。僵直行为定义为指除了呼吸之外,动物未见任何运动。
1.3.5 免疫印迹大鼠海马标本在添加蛋白酶抑制剂的低温裂解缓冲液中进行裂解。离心取上清液,加热5 min使蛋白变性,凝胶电泳分离。转膜,5%脱脂奶粉封闭液中封闭1 h。加入封闭液和一抗抗体PV(1∶1 000)与D4(1∶1 000)室温孵育2 h,洗涤后加入二抗室温孵育1 h,脱色、底物显色反应、显影。采用Image J软件检测海马PV与D4含量。
1.3.6 免疫荧光大鼠腹腔注射2%戊巴比妥钠(60 mg/kg)麻醉,经心灌注生理盐水,然后用4%多聚甲醛溶液灌注。取脑后固定于4%多聚甲醛溶液中,然后在4 ℃下30%蔗糖溶液中脱水过夜。将样品包埋在最佳切割温度化合物中,使用低温保持器将其切割成30 μm厚的切片,并安装在载玻片上。切片在室温下用3%牛血清白蛋白封闭1 h,使用一抗:PV(1∶500)与D4(1∶500)。切片用PBS洗涤3次后,分别与相对应的二抗:山羊抗兔抗体和大鼠IgG-FITC或IgG-Cy3(1∶500)在室温下孵育1 h。二抗洗净后,用DAPI孵育切片进行核染色。用Image J测量各切片的免疫荧光均值。
1.3.7 场电位记录2%戊巴比妥钠(40 mg/kg)腹腔注射麻醉大鼠,后将动物固定于带精密显微操作器的脑立体定向仪上。开颅剥离硬脑膜后,用四通道微丝阵列电极记录单侧海马CA1区局部场电位(local field potential,LFP)。根据大鼠脑图谱在立体定位仪(前部3.8 mm,侧方1.8~2.2 mm,水平距前部3.0 mm)中确定坐标。记录大鼠在新物体识别实验中探索时的局部场电位。经过0.3~300 Hz的通带滤波,然后以2 kHz的频率进一步放大。记录的LFP用50 Hz缺口过滤以去除干扰。对于LFP分析,宽带记录在1250 Hz下采样。所有数据分析应用Neuroexplorer(Plexon Inc, Dallas, TX)软件。
1.4 统计学方法使用Graphpad Prism 7.0软件进行统计分析,计量资料以均数±标准误(Mean±SEM)表示。组间两两比较采用独立t检验,多组间的差异采用单因素方差分析,多重比较采用Tukey法。相关性分析采用Pearson相关性分析。以P < 0.05为差异有统计学意义。
2 结果 2.1 行为学实验结果旷场实验中,各组大鼠在总探索路程、中央格停留时间差异无统计学意义(P > 0.05)。与sham组比较,CLP组动物新事物接触时间、新事物识别率与场景僵直时间均显著降低(P < 0.05),而CLP + RO-10-5824组新事物接触时间与新事物识别率均显著增加(P < 0.05),见表 1。
组别 | 总路程(m) | 中央格时间(s) | 新事物接触时间(s) | 新事物识别率(%) | 场景僵直时间(s) | 声音僵直时间(s) |
Sham组 | 29.3±3.4 | 12.4±2.4 | 47±3 | 68±4 | 72±7 | 102±8 |
CLP组 | 27.8±3.2 | 10.3±2.2 | 36±3a | 49±4a | 56±7a | 98±9 |
CLP+RO组 | 28.6±3.2 | 13.1±2.6 | 44±3b | 63±4b | 61±6 | 104±9 |
注:与sham组比较,aP < 0.05;与CLP组比较,bP < 0.05;RO为RO-10-5824 |
因D4受体激动剂RO-10-5824可以激活PV功能,不改变D4的含量,本研究仅检测sham组与CLP组海马D4表达量。免疫印迹结果显示,与sham组比较,CLP组动物海马PV与D4水平显著降低(P < 0.05),见图 1。
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与sham组比较,aP < 0.05 图 1 各组动物海马PV与D4蛋白表达水平 Fig 1 Hippocampal PV and D4 expressions of each group |
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免疫荧光结果显示,与sham组比较,CLP组动物海马PV与D4水平显著降低(P < 0.05),见图 2。
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与sham组比较,aP < 0.05 图 2 各组动物海马PV与D4水平变化(免疫荧光,比例尺=100 μm) Fig 2 Immunohistochemistry results of hippocampal PV and D4 expressions of each group (bar=100 μm) |
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与sham组比较,CLP组动物海马CA1区γ振荡显著降低(P < 0.05),而CLP+ RO-10-5824组γ振荡显著增加。相关分析显示海马CA1区γ振荡能量与新事物识别时间成正相关(r=0.609 2,P=0.015 9)。各组动物海马CA1区θ、α与β振荡差异无统计学意义(P > 0.05),见图 3。
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与sham组比较,aP < 0.05;与CLP组比较,bP < 0.05 图 3 各组动物海马场电位水平变化 Fig 3 Hippocampal local field potential changes of each group |
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SAE是脓毒症患者中最常见的脑病形式,其发生率高达70%,临床表现为认知、行为、觉醒和意识状态的改变[1]。本研究结果显示,SAE动物表现为社交行为异常与记忆受损,这些行为学异常伴随海马PV中间神经元PV表达与D4受体下调以及γ振荡缺失,而特异性D4受体激动剂RO-10-5824可上调γ振荡,逆转SAE动物社交行为异常,提示γ振荡在SAE中发挥关键作用。
目前SAE的发病机制已取得较大进展,如中枢系统炎性反应、氧化应激反应、线粒体功能障碍、神经元损伤与表观遗传学调控等有关[3-4],然而其确切的发病机制仍有待进一步阐明。神经元兴奋和抑制平衡是维持正常学习记忆功能的基础,而这种平衡被打破则可能引起中枢系统疾病[5-8]。PV中间神经元是γ-氨基丁酸(GABA)能神经元的主要细胞类型,约占40%~50%。越来越多的证据表明,PV中间神经元在维持神经网络兴奋和抑制平衡中发挥重要作用。尤为重要的是,PV中间神经元是产生γ振荡的主要细胞类型,后者是神经微环路的一种基本形态且普遍存在于动物和人类皮层、海马以及丘脑等多个大脑区域[10-11]。研究表明,γ振荡可为神经元的同步化放电提供精确的时间模板,可增强突触前和突触后神经元活动同步性,在“信息整合”功能中扮演重要角色,从而在学习、记忆、注意力、执行力等高级神经活动中发挥重要作用[12]。在有记忆损害的阿尔兹海默病患者的脑电图中,其自发的或在图片刺激条件下引发的γ振荡均显著降低[13]。在双向抑郁障碍中,γ振荡亦出现显著异常[14]。已有研究指出,通过兴奋PV中间神经元诱发的γ振荡能减少阿尔兹海默病动物模型脑内Aβ的产生,从而改善认知功能[15]。本研究发现CLP后海马PV及D4受体显著降低,γ振荡下降,伴随学习记忆功能受损,而应用D4特异性受体激动剂RO-10-5824激活PV可上调γ振荡,提示PV中间神经元是产生γ振荡的重要细胞类型,这与近期研究结果一致[6]。进一步分析显示,海马γ振荡能量与新事物识别时间呈正相关,且上调γ振荡可改善部分认知行为学异常,这进一步印证了PV中间神经元及其γ振荡在认知功能中的重要作用。需要指出的是,本研究表明D4特异性受体激动剂RO-10-5824只改善部分认知行为学异常,提示D4特异性受体激动剂可能存在非特异性效应。
综上所述,本研究结果显示海马γ振荡异常在SAE中发挥关键作用,鉴于PV中间神经元及γ振荡在认知功能执行中的重要作用,对其进行有效干预有望成为SAE等相关疾病防治的新方法。
利益冲突 所有作者均声明不存在利益冲突
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